质粒DNA提取后的储存条件对于保持其活性至关重要。以下是一些推荐的储存方法:1.**干燥保存**:质粒DNA以干粉状态保存是比较好的方法。如果总DNA以溶液形式保存,可以使用1×TE缓冲液稀释,且TE缓冲液的pH值应为8.0-8.5之间。2.**低温保存**:植物总DNA低温保存比较好在-80℃以下或液氮保存。如果没有条件,也可以在-20℃保存。总DNA应避免经常冻融,同时建议每份样品保存3-5个样本。总DNA提取后保存的时限通常较组织要长(>两年),但若长期保存,每隔两年应抽测,对不符合使用要求的DNA进行更新。3.**避免反复冻融**:反复冻融会破坏DNA的完整性和活性,因此应尽量避免。4.**使用保护剂**:化学添加剂如二甲基亚砜(DMSO)可以防止DNA单链断裂,但因其毒性和使用量的问题,并不是理想的保护剂。5.**封装技术**:通过封装技术保存DNA,可以隔绝外界水、氧气和光等可能影响DNA稳定的因素。例如,DNAshell®技术基于密封的不锈钢微型胶囊,在惰性气氛下,给予DNA干粉保护。6.**使用稳定剂**:一些天然的双糖,如海藻糖,被认为是一种多功能的保护剂,可以保护生物体免受冷冻、加热等不利条件的影响。Cas12a同源物能够识别更简单的PAM序列(如5-TTN),这使得基因组的覆盖率显著提高。Recombinant Human Siglec-5/CD170 Protein,hFc Tag
提取的DNA质量评估通常涉及以下几个方面:1.**纯度评估**:-**分光光度法**:通过测量DNA样本在260nm和280nm处的吸光度(OD值)来评估DNA的纯度。纯度可以通过OD260/OD280的比值来评估,对于纯DNA,这个比值通常在1.8左右。如果比值低于1.8,可能表明存在蛋白质污染;如果高于1.9,则可能存在RNA污染。此外,OD260/OD230的比值可以用来评估盐离子等杂质的残留,纯DNA的比值应在2.0-2.2之间。-**琼脂糖凝胶电泳法**:通过电泳分离DNA片段,根据DNA在凝胶上的迁移情况来评估其纯度。如果泳道口中存在较亮的条带,可能表明存在蛋白污染。2.**浓度评估**:-**紫外分光光度计**:使用紫外分光光度计测定DNA在260nm处的吸光度,根据比尔-朗伯定律(Beer-Lambertlaw)计算DNA的浓度。对于纯DNA,OD260的读数为1.0时,大约相当于50μg/mL的双链DNA。-**荧光定量法**:使用荧光染料结合DNA,通过测量荧光变化来定量DNA。这种方法比紫外分光光度法更敏感、精确,并且可能对特定的核酸有特异性。
T7EndonucleaseI(T7EI)是一种特殊的DNA内切酶,具有以下特点:1.**识别错配DNA**:T7EI能够识别并切割不完全配对的DNA、十字型结构DNA、Holliday结构或交叉DNA以及异源双链DNA。2.**切割位点**:T7EI切割错配位点5'端的、第二或第三个磷酸二酯键。3.**灵敏度**:T7EI对错配DNA的识别非常灵敏,能够检测并切割单碱基和多碱基的错配。4.**应用**:T7EI常用于CRISPR/Cas9等基因编辑技术导致的基因突变的鉴定。它通过识别错配DNA来帮助鉴定基因编辑是否成功以及是否有非目标效应。5.**直接电泳检测**:T7EI的产物可以直接通过电泳进行检测,这使得它在实验操作中更为方便。6.**来源**:T7EI来源于大肠杆菌菌株,是一种麦芽糖结合蛋白(MBP)和T7核酸内切酶I(T7EI)的融合蛋白。7.**成本效益**:尽管T7EI在商业上使用时成本较高,但它在大规模样本测试中,尤其是在基因突变鉴定方面,提供了一种有效的筛选方法。8.**特殊注意事项**:T7EI能够识别长度大于或等于2bp的插入、缺失或突变导致的错配DNA,但不能识别1bp的插入、缺失或突变。这些特点使得T7EndonucleaseI成为基因突变鉴定中一个非常有用的工具,尤其是在CRISPR/Cas9等基因编辑技术的应用中。
磁珠法提取的DNA通常指的是通过磁珠吸附技术从样本中纯化得到的核酸,而基因组DNA(gDNA)是指一个生物体细胞核中包含的全套遗传信息的DNA。两者的主要区别在于:1.**来源和组成**:-磁珠法提取的DNA可以是基因组DNA,也可以是质粒DNA、线粒体DNA等其他类型的DNA。它是一个广的概念,指的是通过磁珠法技术提取的任何类型的DNA。-基因组DNA特指一个生物体细胞核中的DNA,包含了所有的基因信息,以及可能的非编码区域。它通常包含了大量的碱基对,如人类基因组由大约30亿个碱基对组成。2.**纯度和应用**:-磁珠法提取的DNA的纯度和质量取决于提取过程中的裂解、吸附、洗涤和洗脱步骤,以及磁珠的质量和操作条件。高质量的磁珠法提取的DNA可以用于多种分子生物学实验,如PCR、克隆、测序等。-基因组DNA的提取通常需要考虑其完整性和纯度,以确保后续实验的准确性。基因组DNA提取的难点在于血液样本成分复杂,且白细胞体积占比低,因此提取纯化难度较高。3.**提取方法**:-磁珠法提取DNA是一种高效、快速的核酸提取技术,它利用磁珠表面修饰的特定官能团与核酸的特异性结合,通过外加磁场实现核酸与杂质的快速分离。E1在ATP的存在下激发泛素分子,通过一个硫酯键将泛素的C末端甘氨酸残基与E1酶的活性连接起来。
磁珠法质粒小量抽提试剂盒是一种利用磁性纳米颗粒固相核酸富集技术来纯化质粒DNA的产品。它通常包括高性能纳米磁珠和独特的缓冲体系组合,通过裂解菌体后释放的DNA,能够有效地结合于磁珠表面,漂洗除杂后获得高质量的目的质粒。以下是磁珠法质粒小量抽提试剂盒的一些主要特点和应用:1.**快速简便**:操作步骤简单,无需多次离心,整个抽提过程通常只需20-25分钟。2.**高得率和纯度**:可以从1-5ml新鲜大肠杆菌菌液中分离纯化2-20µg高质量的质粒DNA。纯化得到的DNA质量高,完整性好,OD260/280比值一般为1.8~1.9之间,OD260/230比值大于2.0。3.**适用性广**:适用于1-5mL小体积高通量菌液质粒抽提,且抽提所得的质粒DNA可直接用于酶切、测序、文库筛选、连接和转化等各种下游分子生物学实验。4.**自动化兼容**:可整合移液法自动化仪器和磁棒法自动化仪器进行高通量提取实验。5.**安全性高**:操作过程中不涉及酚/氯仿等有毒试剂,更加环保和安全。6.**成本效益**:相比传统的离心柱法,磁珠法可以减少离心次数,获得完整性更好的质粒,且操作更为简便快捷。7.**操作灵活**:磁珠的使用量可灵活调节,适合不同体积和浓度的样品处理。FnCas12a需要一个crRNA,而不需要tracrRNA,简化了RNA的设计和构建过程。微球菌核酸酶
Uracil-DNA Glycosylase (UDG) 是一种在DNA修复过程中起作用的酶,其主要功能是识别并去除DNA中的尿嘧啶碱基。Recombinant Human Siglec-5/CD170 Protein,hFc Tag
耐高盐全能核酸酶与一般核酸酶的主要区别体现在以下几个方面:1.**盐耐受性**:-**耐高盐全能核酸酶**:具有较高盐浓度耐受性,在150-900mM盐浓度范围内有效,尤其在600-700mM盐浓度下活性比较好。-**一般核酸酶**:大多数全能核酸酶在高盐环境下会失活,酶切效果降低。2.**活性条件**:-**耐高盐全能核酸酶**:在0.5MNaCl条件下具有比较好活性,这使得它在高盐环境下也能保持高效。-**一般核酸酶**:可能在低盐或无盐条件下活性更高,但在高盐条件下活性受限。3.**应用领域**:-**耐高盐全能核酸酶**:广泛应用于生产工艺流程中高盐环境下核酸污染去除,如病毒纯化、疫苗生产、蛋白和多糖类制药工业等。-**一般核酸酶**:可能更多用于一般的分子生物学实验,如DNA或RNA的降解,但不特别针对高盐环境。4.**酶切效果**:-**耐高盐全能核酸酶**:能够有效去除核酸残留,将所有类型的DNA和RNA降解为3~5个碱基片段。-**一般核酸酶**:酶切效果可能受到高盐环境的影响,导致效率降低。5.**pH范围**:-**耐高盐全能核酸酶**:具有宽泛的pH范围(7.0-11.0),在这一范围内保持活性。-**一般核酸酶**:可能具有更窄的pH活性范围。Recombinant Human Siglec-5/CD170 Protein,hFc Tag
Cre重组酶在基因编辑中的操作主要涉及以下几个步骤:1.**识别与结合**:-Cre重组酶首先识别并分别结合两个LoxP序列的两个反向重复序列,形成一个二聚体。2.**四聚体形成**:-两个二聚体互相靠近,形成由四个Cre分子与两个LoxP位点结合形成的四聚体复合物。3.**DNA切割与交换**:-Cre重组酶在每个LoxP位点的间隔序列中引导单链切割,产生带有3’端羟基的断裂。每个LoxP位点的两个单链分别被切割。切割产生的自由3’端与对侧的3’端进行交换和重连,形成Holliday交叉结构。4.**分子重组与解旋**:-Holliday交叉结构通过Cre酶的作用被解旋并重组,形成新的重组产...