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膜片钳电生理技术服务基本参数
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膜片钳技术是一种记录通过离子通道的离子电流来反映细胞膜上离子通道分子活动的技术。是用来研究单个离体的活细胞、组织切片或细胞膜片离子流的电生理实验技术。这项技术在可兴奋细胞如神经元、心肌细胞、肌纤维和胰腺细胞的研究中起至关重要的作用,也可用于研究特殊制备的巨型球状体中的细菌离子通道。传统膜片钳技术对实验人员的技术要求非常高,一般地,实验人员需要经过严格的长期的训练,才能准确且快速的操作。膜片钳技术是用于纪录全细胞或个别细胞膜上离子信道电生理特性的研究方法膜片钳使用操作注意:禁止私拉电线,如有实验要求可与老师及时沟通。无锡细胞生物学膜片钳成像

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膜片钳实验中电极制备之分两次拉制,首先次拉长7~10mm,直径小于200μm,在此基础上进行第二次拉制,较终使尖锐端的直径为1~2μm,两步拉制的目的主要是使电极前端的锥度变大,狭窄部长度缩短,因此可降低电极的串联电阻,也可减少全细胞记录时的电极液透析时间。由于膜片微电极较忌沾染灰尘和脏物,更忌触碰尖锐端附近部位,所以一般要求在使用前制作。抛光:将电极固定于显微镜工作台上,在镜下将尖锐端靠近加热丝,当通电加热时,可见电极尖锐端微微回缩,此时电极变得光滑,且尖锐端的杂质烧去,得到较干净的表面。从而有利于和细胞膜紧密封接,并在封接后更易保持稳定。湖州神经生物学脑定位膜片钳原理及步骤膜片钳使用的注意事项:向玻璃微电极灌注内液时切勿灌太多,以防液体进入银丝底部增加噪声。

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膜片钳使用的注意事项:工作原理膜片钳是一种能够直接观察单一的离子通道蛋白质分子对相应离子通透难易程度等特性的一种实验技术。它的基本原理是以一个光洁,直径约为0.5~3um的玻璃微电极同神经或肌细胞的膜接触,之后对微电极另一端开口处施加适当的负压用电极的纤细开口将与电极接触的那一小片膜轻度吸入,如此在微电极开口处的玻璃边沿以及这一小片膜周边会形成紧密的封接,它的电阻能够达到数个或数十个千兆欧,这世界上就是在化学上完全隔离了吸附在微电极开口处的那一片膜同膜的其余部分,通过微电极记录到的电流变化光光和该膜片中通道分子的功能状态相关联。

全自动膜片钳系统技术指标:1)操作简单,全过程可自动化。2)实验迅速,通量高。一般每天可达到50个实验数据左右。3)药液交换迅速。细胞内、外液的交换是在平面芯片上进行,所以药液交换非常迅速,作用时间快,外灌流时间常数:~200ms内灌流时间常数:~2s。4)药物消耗极低。每次更换的外液只需十几微升。5)信号准确,噪声少。使用了先进的微型“法拉第板”替代传统的“法拉第笼”,极大的减少了噪声源,记录数据的电噪音很低(小于300fA/500MΩ)。6)扩展功能多。配套扩展设备丰富,如内灌流系统、温度控制系统、脂质体制备器等等。7)软件强大。软件的功能全部,可按照操作者设定的参数方案自动执行实验,进行细胞吸附、封接和维持全细胞记录模式;并兼容常规膜片钳放大。膜片钳的应用:在通道电流记录中,可分别于不同时间、不同部位施加各种浓度的药物来研究。

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膜片钳技术的基本原理和方法:膜片钳使用的基本方法是,把经过加热抛光的玻璃微电极在液压推进器的操纵下,与清洁处理过的细胞膜形成高阻抗封接,导致电极内膜片与电极外的膜在电学上和化学上隔离起来,由于电性能隔离与微电极的相对低电阻(1~5MΩ),只要对微电极施以电压就能对膜片进行钳制,从微电极引出的微小离子电流通过高分辨、低噪声、高保真的电流-电压转换放大器输送至电子计算机进行分析处理。膜片钳技术实现的关键是建立高阻抗封接,并能通过特定的记录仪器反映这些变化。膜片钳技术用特制的玻璃微吸管吸附于细胞表面,使之形成10~100MΩ的高阻封接。膜片钳使用操作注意:拉制仪提前预热(至少30min)。且用完及时关闭。黄山神经生物学脑片膜片钳哪家好

膜片钳使用操作注意:不得在本机电脑下载别的软件,拷数据时需用实验室配置的U盘。无锡细胞生物学膜片钳成像

膜片钳技术之全细胞记录的实验流程:(1)仔细检查实验系统各仪器间的线路连接。(2)依次打开各仪器的电源开关和实验软件,检查各参数的初始设置。(3)将样品置于倒置显微镜的载物台上。(4)电极安装。(5)偏移电位的补偿和电极电阻的测定:在微操纵器控制下使微电极进入浴液,电流基线通常会立刻漂离零位,若此时处于VC模式,在维持电压为零时,通过调节偏移电位补偿,使电流基线等于零,此时可见基线上叠加有响应电流方波。(6)细胞封接。(7)电极电容补偿:若无特殊要求,一般将保持电位设为受试细胞静息电位平均值。无锡细胞生物学膜片钳成像

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在进行细胞吸附式膜片钳记录时,一般来说,我们通过电压钳(voltageclamp,VC)模式将细胞膜电位维持在-60mV(大多数脊椎动物神经元的静息膜电位),从而保证通过电极尖锐端的电流即为跨膜离子流。一般来说,细胞吸附式膜片钳可以作为对照来验证其他单通道记录构型下通道活动的改变情况,也可以用来检测化学物质引起的通道的和活动/对通道活动的影响是否经过胞内信使的介导。这里有一点需要注意,每个待研究细胞的Em都会有轻微的差异,因此我们在分析cell-attached的数据的时候,需要拿出事先记录好的Em,一般有三种方法:用胞内记录或全细胞记录的方法,获得一个平均Em;在实验结束时,patch破裂,...

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