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膜片钳电生理技术服务基本参数
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膜片钳技术之全细胞式与细胞吸附式的区别:全细胞式记录这个名字乍听上去好像和细胞吸附式没啥两样,无非就是把电极戳在细胞上然后记录它的电活动。但事实是,这两者存在天壤之别。首先的一大区别体现在外部构型上:在cell-attached的记录中,我们不需要用电极戳破细胞膜,只需将其怼在细胞膜上即可;但在whole-cell的记录中,我们不只要将电极怼进细胞膜内,而且还不能怼得过深或过浅,否则你就无法记录到有用的电信号。概括一下就是,要形成全细胞记录必须打破细胞膜,但由于这个操作比较厉害,所以要破膜时请相信玄学。其次,第二大区别在电阻补偿上:在cell-attached的记录中,由于我们无需打通细胞内外膜,因此细胞膜上的各种离子通道或蛋白质就没有串联在电路当中,但是在whole-cell中,串联电阻(Rs)就存在了,因此软件输出的命令电压也就不等于细胞的跨膜电位,故我们需要对其进行补偿。这些注意事项包括:电极电容及细胞膜电容补偿问题,漏电流问题,液接电位的校正问题,空间钳位问题,细胞内容物被电击内液稀释问题,电极内液的成分问题等。膜片钳使用的注意事项:换液时应时刻观察浴槽,防止液面过低或液体溢出污染镜头。芜湖神经生物学脑定位膜片钳方案

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膜片钳实验的细胞膜型:一个完整的细胞膜电学模型包含几个基本组分:膜电容,膜电阻和膜电势。这三个电学组分形成的原因各不相同:1、膜电容(membranecapacitance,Cm)的形成是由于生物膜为磷脂双分子层,对离子和其他水溶性物质均不通透,遂使细胞膜成为了电的不良导体,进而导致细胞外液-磷脂双分子层-细胞内液构成了细胞膜电容。Cm的大小与细胞膜表面积成正比,与磷脂双分层的厚度成反比。膜电容在这里的作用,主要为完成细胞的充放电过程。2、膜电阻(membraneresistance,Rm)的形成是由于细胞膜上的蛋白质通道,也就是离子通道的存在。离子和小的极性分子只有通过通道才能进出细胞膜,因此膜电阻在这里的作用,主要就是控制离子的进出。3、膜电势(membranepotential,Vm)又称膜电位,源自膜内外离子浓度的差异,离子浓度的差异又源于细胞膜对离子的选择透过性。膜电位一般可分为静息电位、动作电位和等级电位(不懂的自己去查,此处不赘述)。膜电位的作用主要是维持神经元的兴奋性,并改变离子通道的状态。无锡全自动膜片钳成像网站全自动膜片钳系统技术指标:药液交换迅速。细胞内、外液的交换是在平面芯片上进行。

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膜片钳技术之全细胞记录的实验流程:(1)破膜:加大微电极内的负压将细胞膜吸破,此时可见时间常数较大的全细胞膜电容电流的出现,以及方波电流的轻微加大。①可用嘴吸;②也可用注射器施加负压;③还可以在施加负压的基础上进行电击穿来破膜。若只用电击穿破膜,形成的入口电阻Ra较大。(2)细胞破膜后,若所用浴液的渗透压比电极内液的渗透压略高,则应该将所施加的负压力在几秒内或几十秒内去掉;反之,适当保留一点负压对破膜状态及细胞的稳定更有利。(3)全细胞膜电容补偿:调节全细胞膜电容补偿板块中的Cm和Rs进行膜电容电流补偿,使输出电流信号中细胞膜电容电流成分消失或变至较小。(4)串联电阻补偿:打开串联电阻补偿键,调节串联电阻补偿至不产生震荡为度。(5)漏减调节。(6)正式进入标本细胞的检测。

膜片钳使用的注意事项:1.为了防止尘埃、静电伤害机器,每天做实验前请用清水拖地。2.拉制仪使用前需预热15-30min。3.银丝电极及地线发白时,请先用砂纸轻微打磨,再浸入新鲜的次氯酸钠溶液镀氯化银,如果银丝电极30min未变黑,则考虑更换次氯酸钠。4.先开放大器,后开软件;先关软件,后关放大器。5.非必须用到汞灯时请不要打开汞灯电源,打开后至少需1个小时才可关闭。6.在放大器打开时不能用手、金属物品或其它导电的物品接触电极丝(包括地线),在取放细胞片时请关闭放大器。膜片钳技术用特制的玻璃微吸管吸附于细胞表面,使之形成10~100MΩ的高阻封接,被孤立的小膜片面积为微米数量级,因此封接范围内细胞膜光有少数离子通道。膜片钳技术在可兴奋细胞如神经元、心肌细胞、肌纤维和胰腺细胞的研究中起至关重要的作用。

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膜片钳电生理技术服务只适用于药物的初筛和二次筛选,且对样本有很高的选择性,而传统的膜片钳技术可适用于各种样本,应用范围广,能够分析检测所有的离子通道类型,同时能够分析离子通道的动力学特征。因此目前,传统膜片钳技术仍然是不可替代的。在进行膜片钳实验时,玻璃电极给负压并吸住细胞,形成高阻封接,破膜,给药,记录数据的过程,都需要细胞保持比较好的活性状态,才能更加高效的获得有效数据。因此细胞的稳定性就成了评估样品好坏的关键。膜片钳芯片技术是继细胞芯片之后的又一种崭新的分析细胞电生理参数的芯片技术.由于该芯片除了具有传统膜片钳的高分辨和高准确性特点外,还具有高通量、自动化以及细胞多通道参数和细胞网络参数在线和实时检测等优点.因此,该芯片技术将很大促进细胞离子通道、细胞网络传导以及药物筛选的研究和应用。膜片钳和电压钳的区别:电位固定的细胞膜面积不同,进而所研究的离子通道数目不同。广州细胞生物学膜片钳全细胞记录应用

膜片钳使用的注意事项:浴槽及灌流系统用毕请及时清洗,防止长菌影响实验。芜湖神经生物学脑定位膜片钳方案

膜片钳技术—打开细胞电生理研究之门:膜片钳技术(patchclamptechniques)是采用钳制电压或电流的方法对生物膜上离子通道的电活动进行记录的微电极技术。膜片钳技术的原理:用一个尖锐端直径在1.5-3.0um的玻璃微电极接触细胞膜表面,通过负压吸引使电极尖锐端与细胞膜之间形成千兆欧姆以上的阻抗封接,此时电极尖锐端下的细胞膜小区域(膜片,patch)与其周围在电学上分隔,在此基础上固定(钳制,Clamp)电位,对此膜片上的离子通道的离子电流进行监测及记录。芜湖神经生物学脑定位膜片钳方案

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在进行细胞吸附式膜片钳记录时,一般来说,我们通过电压钳(voltageclamp,VC)模式将细胞膜电位维持在-60mV(大多数脊椎动物神经元的静息膜电位),从而保证通过电极尖锐端的电流即为跨膜离子流。一般来说,细胞吸附式膜片钳可以作为对照来验证其他单通道记录构型下通道活动的改变情况,也可以用来检测化学物质引起的通道的和活动/对通道活动的影响是否经过胞内信使的介导。这里有一点需要注意,每个待研究细胞的Em都会有轻微的差异,因此我们在分析cell-attached的数据的时候,需要拿出事先记录好的Em,一般有三种方法:用胞内记录或全细胞记录的方法,获得一个平均Em;在实验结束时,patch破裂,...

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