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动物实验外包模型介绍:小鼠***模型建模方法：1.明矾致敏佐剂：10%明矾溶液（溶于双蒸水）2ml与500ug/mlOVA（溶于PBS）2ml等量混合后，用NAOH调PH值为6.5，室温孵育60min，750r/min，离心5min，去掉上清液，重溶于2mlPBS。致敏时每只小鼠腹腔注射200ul，其中含2mg明矾和100ugOVA。2.致敏：小鼠分别于第0、14天时腹腔注射明矾致敏佐剂0.2ml，对照组注射相同剂量的PBS溶液，正常饮食饲养。3.激发：雾化吸入，第21天时小鼠放入有机玻璃箱，5%OVA雾化吸入。每天30min，共7d，***一次致敏后24h内检测。以小鼠出现烦躁不安、呼吸急促、腹肌痉挛等阳性反应作为造模成功的标准。对照组采用PBS雾化吸入，其他操作均相同。4.末次激发24h麻醉小鼠，摘眼球取血，室温静置2h后于4℃3000r离心10分钟提取血清，放入-80冰箱冻存。取左肺组织于4%多聚甲醛溶液中固定用于病理染色；右肺组织液氮冷冻，-80℃保存用于分生标本。动物模型 - 南京英瀚斯生物提供小鼠模型.**模型.动物实验外包。性价比高的动物实验外包

动物实验外包糖尿病肾病大鼠模型介绍：1型糖尿病动物模型分为三种：第二种allxon诱发的糖尿病动物模型allxon全称四氧嘧啶，它也是一种细胞毒物质，可以通过超氧自由基破坏胰岛β细胞，使得胰岛素分泌减少。一般配成1%-3%浓度即可使用。注射剂量为30-40mg/kg，静脉注射效果较腹腔注射要好。一个需要注意的问题是allxon的注射速度。有人研究过，30s快速静推的成模率比缓慢注射要高。动物呢，还是尽可能全部选用雄性，造模前禁食不禁水12h。这样可以增大动物对allxon的敏感性。注射之后6小时，采用25%葡萄糖水灌胃可以明显地减少动物死亡率。注射后18h，大鼠即可出现***、多尿、多饮等典型症状，血糖会升高至16.67mmol/L以上。随着时间的推移，2周左右即可形成1型糖尿病模型。注意事项：（1）很多研究都显示，注射allxon一个月之后，部分大鼠的血糖会恢复至正常水平，这可能是由于大鼠胰岛代偿作用导致的。这样分析的话，allxon造出的模型可能更加适合短期观察。（2）不要用豚鼠，豚鼠对allxon不感冒，甚至还有抵抗作用。重庆模型动物实验外包整体动物实验外包服务平台。

动物实验外包模型介绍：静脉血栓栓塞(VTE)大鼠模型建模方法：1.术前一晚禁食，自由饮水。2.称量大鼠，腹腔注射水合氯醛（15%）350mg/kg麻醉，腹部正中剃毛后用碘酒及酒精擦拭手术区域。3.沿腹白线切开腹腔，钝性分离下腔静脉，用5-0缝线线在肾静脉下方结扎下腔静脉和其主要分支，再用5-0缝线缝合内层，3-0缝线缝合外层，将大鼠置于加热垫维持肛温在37±0.5℃。4.待大鼠苏醒后自由饮水，正常饲养。

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动物实验外包模型介绍：复合因素致萎缩性胃炎动物模型【造模方法】1.大鼠以20mmol/L去氧胆酸钠每日灌胃6ml/kg,连续27周;40%酒精每周二、五空腹灌胃6ml/kg,连续12周,之后改为60％酒精,再连续15周;0.1%氨水放在避光的饮水瓶中,自由饮用,每天调换,连续27周。2.大鼠用0.2%去氧胆酸钠作饲料,每天以55℃热开水2ml/只进行灌胃刺激,并在造模的第1周及第5周每只皮下注射佐剂抗原免疫1次。造模期间动物常规喂养,连续造模90天。本法也可将0.2%去氧胆酸钠换为猪胆汁,将胆汁与50℃热水1：1比例12.5ml/kg灌胃。3.大鼠以60%酒精,每周空腹灌胃2次,每次8ml/kg;20mmol/L去氧胆酸钠灌胃,每日1次,每日8ml/kg;0.05％~0.1%氨水作为大鼠日常饮用水自由饮用,并记录每日饮用量;5mg/ml吲哚美辛灌胃,每日1次,每次8ml/kg,共24周。观察指标为:病理组织学改变,胃黏膜屏障功能指标,胃分泌功能指标等。动物实验外包，动物造模，实验经验丰富。

动物实验外包，常见的动物模型动物模型及药效评价：1.小鼠或者裸鼠，皮下**模型、原位肺*模型、原位肝*模型、小鼠溃疡性结肠炎模型、******模型、酒精肝模型；2、动物药代动力学和组织分布实验：小鼠或者大鼠；3、急性毒性实验（LD50测定）：小鼠 南京英瀚斯生物，专业的动物实验外包服务平台。有自己的实验室，动物房、分子检测平台、病理检测平台等，可以承接动物造模、病理检测、分子检测、细胞实验，欢迎了解。英瀚斯生物专业实验外包。南京动物实验外包公司，脑出血动物模型。云南靠谱的动物实验外包实验室

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动物实验外包模型介绍：非酒精性脂肪肝病模型 饮食诱导模型介绍：给予动物高脂、高糖饲料喂养建立的脂肪肝模型，其主要发病机制是营养过剩，食物中脂类、胆固醇和（或）糖类过量，无法完全吸收利用，脂类堆积于肝而引发脂肪肝，进一步出现肝炎性改变及纤维化。该模型与人类NAFLD 相似，是比较常见的NAFLD动物模型。不同的饮食诱导模型具有不同的特点。饮食诱导模型的一个挑战可能是在开始研究之前需要较长的时间造模。选用SPF级健康雄性 C57BL/6 小鼠 ，对照组采用普通饲料喂养，模型组采用高脂饲料喂养，在第 4、8、12 周进行体重及肝指数检测，先**后处死，**用于生化指标检测，肝组织用甲醛水溶液固定标本，制成石蜡切片，采用苏木精-伊红染色（HE染色）、油红O染色，进行病理检测。性价比高的动物实验外包

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