迄今为止，缺血性脑卒中模型覆盖各种小型动物（小鼠，大鼠等）和较大型动物（兔、犬、猪、猴等），并应用于卒中治*药物的临床前药理药效研究。然而，自1970年代以来，大量在动物模型上得到验证的受试药物均未能在人体临床试验中获得理想的治*效果，可能原因包括：1）以往相对简单的动物模型不能准确模拟人类卒中的病理生理过程；2）临床前动物实验的药效评价方法尚难以成功转化到复杂的人体临床试验标准。2009年国际公认的“脑卒中治*学术工业圆桌会议”（Stroke Therapy Academic industry Roundtable，STAIR）发布了临床前缺血性脑卒中药物研发准则，提出提高临床前药理药效研究质量的具体要求。近年来随着更深入的基础研究发现，更多符合人类发病机理和病理生理过程的缺血性脑卒中动物模型已被开发。脑缺血是指由脑内血流量突然减少或代谢速率速增所致脑血流无法满足正常代谢需求的病理状态，可导致脑损伤。南京小鼠脑梗MCAO模型模型检测
TTC染色如何测定脑梗MCAO面积-TTC（2，3，5—氯化三苯基四氮唑）是呼吸链中吡啶—核苷结构酶系统的质子受体，与正常组织中的脱氢酶反应而呈红色，而缺血组织内脱氢酶活性下降，不能反应，故不会产生变化呈苍白。将模型动物大鼠安乐死，解剖取材完整的脑组织，在-20℃速冻20min，便于切片。切片切成6片，每隔2mm切一片。将切片至于2%TTC磷酸缓冲液（PH 7.4）溶液中，用锡箔纸盖住培养皿，放入37℃温箱30min，15min后翻动脑切片，使其均匀接触到染液。脑梗MCAO模型费用这种模型有助于研究脑梗的发病机制，并寻找新的治*策略。
动物卒中模型的制作也是临床前实验研究的前提，缺血性卒中的动物实验模型具有针对性与多样性的特点，并被不断地进行改进与创新，力争制作的动物模型能无限接近真实的人类脑卒中。目前，大鼠、小鼠、猿、猴、犬、兔、羊、猪等多种动物被用于制备局灶性脑缺血模型。线栓法、开颅法、栓子栓塞法、光化学法、FeCl3诱导法、内皮素-1诱导法和自发性卒中法为常用方法，其中线栓法大脑中动脉栓塞（MCAO）为制作局灶性缺血卒中模型*常用的方法。
脑梗MCAO模型成功的评判方法 生物化学指标的检测：在实验过程中，检测血清中C反应蛋白（CRP）、肿瘤坏死因子-α（TNF-α）等生物化学指标的变化。这些指标可以反映炎症反应和缺血损伤的程度，有助于评估模型的成功。 病理学检查：实验结束后，对实验动物的大脑进行病理学检查。观察大脑皮质和海马区的细胞形态、排列情况，评估神经细胞的损伤程度。同时，通过免疫组化染色法检测神经元特异性烯醇化酶（NSE）的表达，以评估神经元损伤的程度。 行为学评估：在实验过程中，对实验动物进行行为学评估，如Morris水迷宫实验、步态分析等。通过比较不同处理组的行为学表现，评估模型的成功。 综上所述，评判脑梗MCAO模型成功的标准包括脑梗死面积、神经功能缺损评分、梗死血管、生物化学指标、病理学检查和行为学评估等方面。只有当这些指标均符合预期结果时，才能认为模型制备成功。实验外包团队可以根据科研人员的需求，设计并执行各种实验。
通过神经功能缺损评分，研究人员可以定量地评估脑梗死后对动物神经功能的影响。这对于研究脑梗死的病理过程、治*方法以及药物效果具有重要的意义。同时，这种评分方法也可以为临床医生提供参考，帮助他们更好地评估患者的神经功能缺损程度。 需要注意的是，神经功能缺损评分只是一种评估方法，不能完全戴*动物的神经功能状态。因此，在实验中还需要结合其他指标和方法进行综合评估。此外，由于实验动物的个体差异和环境因素的影响，实验结果也可能存在一定的误差。因此，在进行实验研究时需要严格控制实验条件和操作过程，以保证实验结果的准确性和可靠性。动物疾病模型的标准化和规范化非常重要，因为这可以确保研究结果的可重复性和可比性.上海定制脑梗MCAO模型TTC染色
将动物放在一个旋转的木棒上，观察动物是否能保持平衡，以评估动物的平衡能力和协调性。南京小鼠脑梗MCAO模型模型检测
局灶性缺血模型/线栓法引起的大脑中动脉栓塞（Middle Cerebral Artery Occlusion，MCAO）由于大（小）鼠脑血管解剖结构与人类相似，大脑中动脉也是临床缺血性卒中的高发部位，同时，采用线栓法也便于观察缺血和再灌注、永jiu（持续）和短暂性损伤等多种状态，在评价药物量效关系和确认治*时间窗等方面有一定优势，因此，MCAO是目前*广为接受一种药效模型。神经元尼氏体与细胞核呈蓝紫色，背景呈浅蓝色。结果显示：假手术组海马 CA1 区神经元排列规整，神经元胞体及树突内尼氏体丰富;实验组神经元排列紊乱，并伴有细胞水肿和坏死发生，尼氏体染色较浅，模糊不清;阳性*组神经元尼氏体排列较为规整，偶见神经细胞水肿，和溶解。南京小鼠脑梗MCAO模型模型检测
