支原体污染的来源主要包括以下几个方面：
1. 实验室环境中可能存在支原体污染源，如空气中的尘埃、其他培养物中的支原体污染等。
2. 实验操作人员的手部、衣物或皮肤表面可能携带支原体，造成细胞培养的污染。
3. 培养基、血清等培养材料如果受到支原体污染，也会导致细胞培养物受到污染。
4. 细胞交叉污染，即使用已受污染的细胞株进行培养时，可能会污染其他细胞。
5. 实验器材带来的污染，如未彻底消毒灭菌的实验器材。
6. 人体是某些支原体的正常菌群，因此操作人员的疏失也可能成为污染源。
7. 细胞库管理不善，造成实验室间的相互污染。
8. 细胞培养过程中的细菌、酵母或霉菌污染在光学显微镜下可见，但支原体污染在光学显微镜下通常不可见，必须通过特定的检测方法进行检测
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细胞培养中支原体难以彻底消灭的原因主要包括以下几点：
1. 无细胞壁结构：支原体是没有细胞壁的微生物，这使得许多作用于细胞壁的抗*素对支原体无效。
2. 微小体积：支原体体积小，能够穿过常规的除菌滤膜，例如0.20微米甚至0.10微米的滤膜。
3. 隐匿性：支原体污染初期很难被察觉，它们在普通光学显微镜下几乎不可见，因此细胞被支原体污染后，前期很难被发现。
4. 传播途径多样：支原体可以通过细胞培养物、细胞悬液、细胞培养用具等途径迅速传播。
5. 污染源 ：支原体污染源包括细胞间的交叉污染、操作人员的口腔、皮肤，以及细胞培养用的组分如血清、培养液等。
6. 环境因素：实验室环境、试验台、超净台、培养箱等可能被支原体污染，引起细胞的污染。
7. 抗*素耐药性：支原体可能对某些抗*素产生耐药性，使得治*效果变差。
8. 检测和清理方法的局限性：一些传统的支原体检测和清理方法可能不够灵敏或有效，导致难以彻底清理支原体
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细胞培养中支原体检测出现假阴性结果可能由以下原因引起：
1. 样本质量问题：如果采集的样本中含有抑制剂或者样本在处理、存储过程中出现问题，可能会影响PCR反应，导致假阴性。
2. 技术或操作问题：实验操作中的误差，如样本处理不当、试剂配制错误、仪器设备问题等，都可能导致假阴性结果。
3. 检测方法的局限性：某些检测方法可能存在灵敏度或特异性不足的问题，导致无法准确检测到病原体。
4. 培养基和培养条件的影响：培养法的灵敏度容易受到培养基和培养条件的影响，如果培养条件不适宜，可能导致支原体无法生长或生长缓慢，从而检测不到。
5. 支原体种类问题：不是所有的支原体种类都能通过培养法检测到，某些特定种类的支原体可能无法在常用的培养基中生长，导致漏检。
在科研中，支原体检测是确保细胞培养纯净性的重要环节。以下是一些在科研中常见的支原体检测方法：
1. 支原体培养法：这是一种传统的检测方法，通过将细胞培养物接种到特定的培养基中，观察是否有支原体生长。这是直接的检测方法，但耗时较长，通常需要数周时间。
2. DNA染色法：使用荧光染料（如Hoechst或DAPI）染色细胞核，然后通过荧光显微镜观察。这种方法操作简便，可以快速得到结果，但特异性不高，可能会有假阳性。
3. 聚合酶链反应（PCR）法：这是一种分子生物学技术，通过设计特异性的引物，扩增支原体DNA，从而检测支原体的存在。PCR法具有高灵敏度和特异性，已成为日常细胞培养维护的可靠方法。
4. 核酸扩增技术（NAT）：NAT技术通过扩增并检测特定的支原体基因组保守序列来进行支原体污染检测，具有快速、简便的特点。
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根据提供的信息，支原体去除试剂是一种混合制剂，通过抑制DNA和支原体生长所必须的相关蛋白合成来取得良好的支原体清*效果，同时对细胞无伤害。它被设计为对细胞毒性小，不影响后续的细胞实验，包括细胞活力检测和细胞转染等。这表明使用支原体去除试剂去除支原体后，理论上不应该对细胞的转染效率产生负面影响。
此外，支原体污染本身会对细胞的转染效率产生负面影响。研究表明，与未污染的细胞相比，支原体污染的细胞转染后具有较低的基因表达水平。因此，去除支原体后，可以预期细胞的转染效率会得到改善，因为移除了影响细胞正常功能的污染物。
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支原体污染和黑胶虫污染是两种不同类型的细胞培养污染，它们具有各自的特点和区别：
支原体污染：在相差显微镜下，支原体呈暗色微小颗粒位于细胞表面和细胞之间。
黑胶虫污染：在高倍镜下，被黑胶虫污染的细胞膜会变得模糊不清，边界不清晰，有粗糙感。
污染的影响：
支原体污染：可能导致细胞增殖缓慢，甚至从培养器皿脱落，影响细胞的DNA、RNA及蛋白表达。
黑胶虫污染：与细胞竞争性生长，开始时对细胞没有什么影响，但当数量多时，细胞生长会受到影响直至死亡。
污染的来源：
支原体污染：可能来源于工作环境的污染、操作者本身、培养基的污染、交叉污染、实验器材带来的污染以及用来制备细胞的原始组织或部位的污染。
黑胶虫污染：可能来源于细胞本身的污染或从动物取材时的污染，也可能通过培养箱空气进行污染。
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