痉挛型脑性瘫痪(SCP)大鼠模型【简介】痉挛性脑瘫指发育异常引起的运动和感觉功能落后，造成肢体肌张力增高、腱反射亢进等一系列综合征。本实验利用脑立体定位解剖图谱,对大鼠的锥体束部位进行精确的立体定位,通过微量注射器对大脑锥体束所在部位注射无水乙醇造成锥体束坏死,的模拟了痉挛型脑瘫的解剖学及病理改变,术后大鼠产生明显的屈曲痉挛症状,且屈肌肌张力增高,症状和体持续时间较长,稳定性良好。从而建立一种可复制性良好且痉挛持续时间较长的稳定的大鼠痉挛型脑瘫动物模型,为进一步深入的探究痉挛型脑瘫的基础研究和临床诊治打下基础【目的】痉挛型脑性瘫痪(SCP)大鼠模型建立【动物】SPF级SD大鼠，雄性，周龄6~8W，体重：200~250g【方法】1、大鼠麻醉，颅顶脱毛备皮；2、大鼠脑定位仪固定大鼠，颅顶正中切口，长度约2cm开口暴露前囟及矢状缝；3、缝线将皮肤左右分开固定，前囟后10mm、矢状缝左侧；4、微量注射器移至开孔处修正骨孔，注射器垂直向颅内插入，缓慢注射无水乙醇15ul，注射完移除注射器，棉球压迫止血；5、缝合创口后维持25°体温，等待苏醒，观察大鼠状态。【观察】术后3天模型大鼠摄食减少、右侧肢体跛行、右前肢不负重、右前肢及右前爪屈曲痉挛明显。细胞划痕(wound healing）法是简捷测定细胞迁移运动和修复能力的方法。贵州模式科研技术服务培养
应退回纯酒精中重新脱水，然后再透明，否则切片难以镜检。（4）二甲苯应尽量保持无水，应经常更换，或用纱布包无水硫酸铜放入染色缸内吸收水分。5.透蜡注意事项（1）透蜡的目的是除去组织中的透明剂（如二甲苯等），使石蜡渗透到组织内部达到饱和程度以便包埋。透蜡时间根据组织大小而定。（2）尽量保持在较低温度中进行，以石蜡不凝固为度。（3）透蜡温度要恒定，不可忽高忽低。（4）操作要迅速，力求在短的时间内完成石蜡透入过程，以免引起组织变硬、变脆、收缩等。（5）注意温度不要过高，以免组织发脆。6.染色水洗注意事项（1）染色原理：伊红主要染细胞质，着色浓淡应与苏木精染细胞核的浓淡相配合，如果细胞核染色较浓，细胞质也应浓染，以获得鲜明的对比。（2）染色时间应根据染色剂的成熟程度及室温高低，适当缩短或延长。室温高时促进染色，染色时间可短些，否则可适当延长时间，冬季室温低时可放入恒温箱中染色。（3）注意流水不能过大，以防切片脱落。（4）如果细胞核染色较浅，细胞质也应淡染。可在伊红乙醇液中滴加数滴冰醋酸助染，促使细胞质容易着色，并且经乙醇脱水时不易褪色。江苏外包科研技术服务技术了解更多关于动物模型的问题欢迎来电咨询，如您需要，竭诚为您服务。
建议按照2×106每孔的数量将293T细胞均匀铺入。(2)第二天：在24小时之内，观察293T细胞的汇合度在90%~95%之间时，向其中加入DNA-脂质体复合体，DNA-脂质体复合体制备方法如下：a)轻轻混匀LipoMax，根据说明书加入相应量于500µlOpti-MEM无血清培养基中，混合均匀并置于室温5分钟。b)在500µlOpti-MEM无血清培养基中稀释DNA，总质量为15µg按照载体质粒:psPAX2:=4:3:1的比例加入DNA。c)将稀释后的LipoMax和稀释后的DNA轻轻混匀，常温静置20分钟，形成DNA-LipoMax复合体。(3)将DNA-LipoMax复合体轻柔地滴加至细胞培养皿中，轻轻摇晃培养皿混匀，放入细胞培养箱中培养。(4)病毒收集浓缩病毒：加入DNA-LipoMax复合体48小时后，收集病毒上清，同时加入10ml预温的293T培养基到细胞培养皿中。将收集到的病毒上清存在4℃冰箱中;收集72小时病毒上清，与48小时病毒上清混在一起。将离心机温度降温到4℃，600g，离心5分钟，去除其中的细胞碎片，上清液经µm滤头过滤，加入病毒浓缩液，配制浓缩病毒液。将浓缩后的病毒放于4℃冰箱摇床上，旋转过夜。第二天，4度离心机，3000~4000g离心15分钟。弃掉上清液，加入1Xpbs或培养基重悬。
2）固定的目的①保持其原有状态：使细胞内的蛋白质、脂肪、糖、酶等成分转变为不溶性物质，迅速防止、细胞的死后变化，防止自溶与，防止细胞过度收缩或膨胀而失去其原有形态结构，使之尽量保持生前的状态和结构。②以便染色后易于鉴别和观察：不同成分对染料有不同的亲和力，以便染色后易于鉴别和观察。③使块硬化，便于制作薄片（块在脱水、包埋、切片、染色等过程中不易损坏）。（3）固定液固定液种类：一类是单纯固定液，即只有一种试剂；另一类是混合固定液，由两种或两种以上试剂组成。作为较好的固定液，应有下列特性，首先，有强渗透力，能迅速的渗入内部；其次，不使过度收缩或膨胀，并能使内欲观察的成分得以凝固为不溶性物质；能使达到一定的硬度并获得较佳的折光率和对某些染料具有较强的亲和力。固定液通常使用10%的甲醛溶液。特殊要求的，常需要特殊的固定液，取样之前应做好准备。如眼球样本应使用FAS眼球固定液，脂肪应使用脂肪固定液等。此外，在进行骨样本制备的时候，还应注意提前进行脱钙处理，可根据具体情况选择慢脱钙或快脱钙处理。总的来说，样品的采集是实验中至关重要的一环，如果取样环节出现了偏差，往往会导致后续检测结果的偏移。分享的内容能对大家有所帮助，想要了解更多，欢迎致电咨询。
常见的有理染色、WesternBlot、PCR等），实验仪器是否需要预约使用。如果需要外送公司检测，需要提前联系好商家，以及了解清楚样本如何获取，如何运输。饲养动物及干预动物购买后需要将时间节点提前规划好，比如，周需要做什么？测量体重？观察饮食？测量需要的指标？中间有无特殊操作？比如灌胃、测量体重、做CT检测、取血？……第几周取材？取材需要哪些？预实验方案就要提前设计清楚以上内容。取材及样品准备取材需要提前到动物房禁食、称体重、取出动物、手术的、固定所需要的试剂和EP管，WesternBlot和PCR所需要的样本储存条件。比如冻存管、EP管，是否需要冰块？是否需要液氮？取材当天需要多少人？是否需要请人帮忙？如果所需要取出的样本较多，建议大家请人一起帮忙，流水线作业，这样能节省时间，并且能保证样品的质量。如果请人，每个人需要负责哪一板块的工作，比如谁负责，谁负责取血液，谁负责取，谁负责拍照、谁负责储存，都需要提前规划交代清楚。实验指标检测如果是需要自己做的检测，比如常见的WesternBlot、PCR，建议提前可以看看教程（无论是视频还是贴吧，都要自己多方参考）。有了一定的理论基础后，再向老师、师兄师姐学习经验和技术。实验干货 | 常用分子生物学技术原理.浙江乳鼠科研技术服务外包
随着跨学科研究的深入开展，动物疾病模型将在未来发挥更为普遍的作用，成为生命科学、医学等领域研究工具。贵州模式科研技术服务培养
采用opti-MEM和Lipo3000分别转染含有目的基因的pMSCV-eGFP、VSV、GAG质粒及对照载体，每皿加入脂质体-质粒转染混悬液按购买脂质体相关说明书操作定量。继续培养24h。2)24小时后，将培养基更换为新鲜的DMEM完全培养基，放进细胞培养箱继续培养48~72h。3)48~72h后收集上层培养液，并过μm滤膜，采用ELISA法对所获得的慢载体进行滴度测定。如不及时使用可以冻存于-80℃。3、慢转染1)转染前1天将细胞接种6孔培养板，时细胞的融合率约为50%，前需换液，加入1mLDMEM完全培养基。2)冰浴融化后加入相应体积的液及聚凝胺（Polybrene），混匀后放入37℃孵箱中继续培养3)4h后补充1mL培养基，14h后换液（24h内换液即可）。4)72h后用倒置显微镜观察荧光，监测效率，出现较多荧光时将等量的转染细胞和未转染细胞分别加入等浓度Puromycin（Puromycin或其他筛选浓度需要事先摸索）。5)待未转染细胞全部死亡并且可观察到满意荧光量时，降低Puromycin浓度培养。也可以挑去单克隆细胞株进行进一步培养，以得到满意的稳定表达目的基因的细胞株。6)使用qRT-PCR和Westernblot的方法检测目的基因的表达量和蛋白水平是否显著提高。7)由此可得三组细胞株：a.正常细胞株；b.空载载体的细胞株。贵州模式科研技术服务培养
