代谢组学的研究对象大都是相对分子量在1000以内的小分子物质，因此常用的血液样本在取样后，应小心操作，防止溶血，尽快分离出血清，分置于温环境下保存。由于用于理实验的动物采集相对其他样品的采集，操作更繁琐，在处理过程中许多细节容易忽略，造成数据不完美（甚至不能用）。因此接下来将重点介绍样品采集的注意事项及其固定。样品采集注意事项应新鲜，操作时间尽可能短，否则细胞发生死后变化、自融及现象。是动物心脏还在跳动时采集，样本取出后在5分钟以内置于固定液内，避免长时间暴露在空气环境中。块尽量小而薄。块的厚度以不超过5mm为宜，较为理想的厚度为2mm左右，主要目的是使固定液迅速而均匀的渗入块内部。勿使块受挤压。在采集过程中，应尽量选择较为锋利的手术，如手术刀片等，避免操作过程中挤压挫伤标本。挤压过的均不可用。固定液的量一般以块大小的20倍为宜，能够在容器内自由移动。尽量保持的原有形态。新鲜经固定后，或多或少产生收缩现象（如胃肠），为此可将展平，以尽可能维持原形。保持清洁。块上如有血液、污物、粘液、食物、粪便等，可用生理盐水冲洗，然后再入固定液，但要注意防止损伤。要熟悉采集部位。要能准确的按解剖部位采集。动物疾病模型作为研究工具，在探索疾病发展和检查的过程中发挥了巨大的作用。江苏模式科研技术服务分离
原代细胞是指在机体或组织中直接从生物体分离出来的、未经传代培养的细胞。这种细胞保持着其原始的生物学特性，具有高度的活性和分裂能力。原代细胞在许多生物医学研究中具有重要地位，包括药物筛选、疾病模型的建立以及疫苗研发等。原代细胞的获得通常是通过组织剪切、消化或酶解等方式从机体或组织中分离出来。这些细胞脱离了它们在生物体中的环境，但是仍然保持着其基本的生物学特性，包括细胞膜、细胞核、细胞器以及其他重要的生物分子。原代细胞在未经过传代培养的情况下，保持着其原始的生物学特性，因此，它们常常被用于药物筛选、毒理学研究等。同时，由于原代细胞具有高度活性和分裂能力，它们也被用于组织工程和再生医学中，如皮肤移植、骨头修复和神经再生等。此外，原代细胞模型在疾病研究中也扮演着重要角色。由于原代细胞具有更高的生物真实性，使用它们建立的疾病模型能够更准确地模拟疾病的发展过程和药物的作用机制，从而为新药研发和疾病治、疗提供更有效的工具。总之，原代细胞是一种具有高度活性和分裂能力的细胞，在生物医学研究中具有重要的作用。由于其原始的生物学特性。河北模式科研技术服务服务细胞的结构是细胞生物学的重要研究内容之一。
1.首要原则：细胞不重要情况下立即丢弃，培养箱灭菌，所用培养基也都要丢弃，器械等重新灭菌或拆用新的。2.细菌污染一般都救不回来了，发现的时候培养基一般都很浑浊且细胞都死了3.污染且细胞很重要时：遇到念球菌污染，且细胞为基因改造细胞，非常重要。如231贴壁乳腺细胞，发现细胞周围出现很小的串珠透亮圆点，非常像念球菌污染，此时细胞状态尚可，且污染少。处理如下：用预热或室温PBS清洗3次，可适当振摇，将污染冲洗下来。随后加入10-20%双抗到培养瓶，置于37度培养箱1h，之后再用PBS清洗三遍，直至视野下无可见污染。此时细胞也被冲下大部分，因此此方法只适用在细胞贴壁强，状态好，密度高时使用。之后每天再更换培养基，每次用PBS冲洗2遍。过几天细胞状态尚可时，消化离心时用500r，3min，去掉上清，重复3次。这个方法是根据文献可利用念球菌和细胞体积重量差异实现分离。基本上这一步做完以后，污染就基本了，接下来就注意多观察，勤换液就行。
实验样本分类实验一般采取样本有：血液样本、样本和细胞样本。通常，样本采集后，应立即用等渗溶液（PBS或生理盐水）尽量把血液漂洗干净（除非血液也是分析对象），用滤纸或纱布吸干，把样本分切成几分，每份的体积约2个黄豆大小，每份用一个管子装。血液样本的采集应根据不同实验的要求，将会采取不同策略。血清样本：全血中不加抗凝剂，血液凝固后取出的不含凝血因子的淡黄色透明液体。（全血标本室温放置2小时3000rpm/min离心15min）血浆样本：全血中加抗凝剂，血液凝固后取出的含凝血因子的淡黄色透明液体。（可用EDTA或肝素作为抗凝剂，标本采集后30分钟内于2-8℃，3000rpm/min离心15min）如果是做生化\ELISA等检测可以考虑血浆和血清，根据获得的样本量可考虑分装成100-500μl/管，可避免反复冻融造成的检测误差。生化：建议优先选择血清，其次选择肝素抗凝血浆；ELISA：建议优先选择血清，其次选择肝素或EDTA抗凝血浆；凝血实验：只能选择枸橼酸钠抗凝血浆；血常规：只能选择EDTA抗凝全血；如果要收集其中的白细胞、血小板等建议用抗凝全血。如果要做流式建议用专门的流式用血液收集管，防止表面抗原的丢失，或者尽快安排就近检测。样本处理取样完后。动物疾病模型还为新药研发和疫苗测试提供了有效的平台。
应根据所检测指标的要求，需采取不同策略处理。在如今分子学当道的现实背景下，动物实验除了对实验动物的体征及生理指标进行全的监控外，各种分子检测甚至是组学检测也开始大行其道，动物实验结束之后的机制研究成为了实验的重头戏。一般来说，动物实验检测对象主要包括：（1）体液中各类因子定性及定量检测由于此类检测对象多为蛋白及各类小分子物质，因此在取样过程中应注意防止此类物质降解，在获取后，应及时置于温（≤-80℃）进行保存，在后续实验过程中，也应当注意保存条件的稳定性，避免反复冻融。常用的方法便是酶联免吸附测定（ELISA），除此之外，可利用生化分析仪及不同检测方法的（比色法、比浊法等）方法对各类生化指标及因子进行定性及定量检测。（2）生理变化及免组化检测常用的理检测多使用H&E染色对细胞质及细胞核进行染色标记，以观察细胞变化。除此之外，许多特殊染色也在理生理变化中得到了应用，如利用Masson染色检测纤维化变，Nissl染色检测神经元损伤，β-半乳糖甘酶染色检测细胞衰老等。此外，还可以通过免组化技术对某些特异性标记物进行免显色检测，达到原位定性或定量检测的目的。。可以发现与疾病发生相关的关键基因和蛋白质，从而为疾病的预防和检查提供新的思路。浙江科研技术服务
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RNA甲基化修饰（m6A）研究RNA甲基化修饰约占所有RNA修饰的60%以上，而N6-甲基腺嘌呤（N6-methyladenosine,m6A）是高等生物mRNA和lncRNAs上为普遍的修饰。目前发现microRNA，circRNA,rRNA,tRNA和snoRNA上都有发生m6A修饰。m6A修饰主要发生在RRACH序列中的腺嘌呤上，其功能由“编码器(Writer)”、“消码器(Eraser)”和“读码器(Reader)”决定[1]。“编码器(Writer)”即甲基转移酶，目前已知这个复合物的成分有METTL3，METTL14,WTAP和KIAA1429；而ALKBH5和FTO作为去甲基酶（消码器）可逆转甲基化；m6A由m6A结合蛋白识别，目前发现m6A结合蛋白（读码器）有YTH结构域蛋白（包括YTHDF1,YTHDF2,YTHDF3，YTHDC1和YTHDC2）和核不均一蛋白HNRNP家族（HNRNPA2B1和HNRNPC）。m6A酶系统METTL3是早先被鉴定为结合SAM的组件，其缺失引起小鼠胚胎干细胞、Hela细胞和HepG2细胞中m6Apeaks的减少。METTL3及其同源蛋白METTL14定位在富含剪切因子的细胞核内亚细胞器－核小斑（Nuclearspeckle）上，显示ｍ６Ａ修饰可能和ＲＮＡ的剪切加工相关。WTAP与METTL3–METTL14二聚体相互作用，并共定位于核小斑，影响甲基化效率，参与mRNA剪。而KIAA1429作为候选的甲基转移酶复合体的新亚基。江苏模式科研技术服务分离
