可以。为了能够高效提取细胞培养上清中的外泌体,磁珠可重复使用5次(同一样品)。试剂盒里的缓冲液含5次提取需要的量。1mL体积以上细胞上清样本建议进行浓缩后再回收,提取时可进行反复抽提,提高提取效率。用血液样品进行实验时,需要根据磁珠状况来判断是否能重复利用;若磁珠发生聚集,利用涡旋仪也无法使磁珠分散,不建议继续使用。详情参考操作说明书。太好了,这样实验成本瞬间就降下来了,那样品纯化所需的比较低量是?老师:使用旋转器的需要500μL以上,使用离心管混合器的需要100μL。样品量更少的情况下加TBS到所需比较低量后再使用ExosomeCapture固定化磁珠。同学:电镜分析需要外泌体的量是多少?外泌体提取:密度梯度离心。成都外泌体提取试剂单价
外泌体是一种存在于细胞外的多囊泡体,可通过细胞内吞泡膜向内凹陷形成多泡内涵体,内涵体与细胞膜融合后释放其中的小囊泡。外泌体的直径在40-110nm之间,其中包含RNA、蛋白质、microRNA、DN段等多种物质,存在于血液、唾液、尿液、脑脊液和母乳等多种体液中。外泌体从发现至今已有30多年的历史,虽然较初被认为可能是细胞的“垃圾”,所以才被排出来,但是近年来研究表明外泌体具有功能活性并可进行细胞间信息传递。如今,研究已经发现外泌体在抗原提呈细胞中呈递抗原程中、一些病症细胞发生的发展、神经细胞信号转导过程中都发挥着重要作用。合肥正规外泌体提取试剂厂家直销它普遍存在并分布于各种体液中,携带和传递重要的信号分子。
外泌体的提取方法:1.超速离心法(差速离心)。超离法是较常用的外泌体纯化手段,采用低速离心、高速离心交替进行,可分离到大小相近的囊泡颗粒。超离法因操作简单,获得的囊泡数量较多而广受欢迎,但过程比较费时,且回收率不稳定(可能与转子类型有关),纯度也受到质疑;此外,重复离心操作还有可能对囊泡造成损害,从而降低其质量。2.密度梯度离心。在超速离心力作用下,使蔗糖溶液形成从低到高连续分布的密度阶层,是一种区带分离法。通过密度梯度离心,样品中的外泌体将在1.13-1.19g/ml的密度范围富集。此法获得的外泌体纯度较高,但步骤繁琐,耗时,对离心时间极为敏感。
1983年,外泌体初次于绵羊网织红细胞中被发现,1987年Johnstone将其命名为“exosome”。多种细胞在正常及病理状态下均可分泌外泌体。其主要来源于细胞内溶酶体微粒内陷形成的多囊泡体,经多囊泡体外膜与细胞膜融合后释放到胞外基质中。所有培养的细胞类型均可分泌外泌体,且外泌体天然存在于体液中,包括血液、唾液、尿液、脑脊液和乳汁中。有关他们分泌和摄取及其组成、“运载物”和相应功能的精确分子机制刚刚开始研究。外泌体目前被视为特异性分泌的膜泡,参与细胞间通讯,对外泌体的研究兴趣日益增长,无论是研究其功能还是了解如何将其用于微创诊断的开发。如何高效地提取外泌体是实现这项新兴液体活检技术临床常规化应用的关键多种细胞在正常及病理状态下均可分泌外泌体。
外泌体的提取方法:1、磁珠免疫法。外泌体表面有其特异性标记物(如CD63、CD9蛋白),用包被抗标记物抗体的磁珠与外泌体囊泡孵育后结合,即可将外泌体吸附并分离出来。磁珠法具有特异性高、操作简便、不影响外泌体形态完整等优点,但是效率低,外泌体生物活性易受pH和盐浓度影响,不利于下游实验,难以普遍普及。2、多聚物沉淀法。聚乙二醇(PEG)为常用的多聚物,可与疏水性蛋白和脂质分子结合共沉淀,早先应用于从血清等样本中收集病毒,现在也被用来沉淀外泌体,其原理可能与竞争性结合游离水分子有关。利用PEG沉淀外泌体存在不少问题:比如纯度和回收率低,杂蛋白较多(假阳性),颗粒大小不均一,产生难以去除的聚合物,机械力或者吐温-20等化学添加物将会破坏外泌体等严重阻碍了我国在外泌体的研究和临床应用上的发展。济南外泌体提取试剂报价
外泌体提纯试剂盒的特色与优势:无需耗时的超速离心,过滤或特殊注射器。成都外泌体提取试剂单价
为了分离外泌体,研究人员用两个这样的单元串联构建了一个装置。首先,使用声波从血液样品中除去细胞和血小板。一旦细胞和血小板被去除,样品进入第二个微流体单元,然后使用较高频率的声波将外泌体与稍大的细胞外囊泡分开。这项工作的通讯作者之一,麻省理工学院材料科学与工程系科学家MingDao博士说:“声波更温和。而且在分离时,这些囊泡受处理的时间只有1秒钟或更短。这是一个很大的优势。”使用该设备,处理100微升未稀释血液样本只需要不到25分钟。“这种新技术可以解决当前外泌体分离技术的缺点,如周期长,一致性差,产量低,污染以及完整性受损等。我们想要把提取高质量的外泌体的过程简化为按一个按钮就在10分钟内获得所需样品一样简单。”研究人员们说。成都外泌体提取试剂单价
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具体步骤是:以下所有步骤都在4℃下进行,1、300×g10min,弃沉淀,去除细胞2、2000×g20min,弃沉淀,去除死细胞3、10,000×g30min,弃沉淀,去除细胞碎片等亚细胞成分4、10,000×g70min,弃上清,沉淀即为外泌体5、PBS(每10ml细胞培养液用30mlPBS重悬)清洗沉淀物,混匀,10,000×g70min6、lmlPBS溶解沉淀(外泌体),立即使用或置于-80℃备用。7、一般超速离心法会结合密度梯度离心,这样得到的外泌体更纯,具体做法第4步后蔗糖梯度离心,10,000×g70min,以去除密度大于1.21g/ml的颗粒。优点是:成本低,操作简单,获得的囊泡...